Molecular MedicineReports

Introduction

Pestycydy są substancjami lub mieszaninami substancji używanymi do zapobiegania, niszczenia, odstraszania lub łagodzenia szkodników, do których należą owady, gryzonie, chwasty, jak również inne niepożądane organizmy (1,2). W związku z tym, w ostatnich latach wzrosło światowe zużycie pestycydów, zwłaszcza w rolnictwie, na obszarach wiejskich. Ekstensywna produkcja rolna wiąże się z dużym zużyciem pestycydów, których pozostałości zanieczyszczają powietrze, glebę, wodę, rośliny, zebrane produkty, sprzęt, ubrania, a także tkanki ludzkie i zwierzęce. Stosowane pestycydy dostające się do organizmu człowieka poprzez oddychanie, połykanie i wchłanianie przez skórę mogą powodować zatrucia(2-4). Stopień powstałych uszkodzeń zależy od wewnętrznej toksyczności substancji oraz indywidualnego stanu zdrowia i wrażliwości (2,4-6).Ekspozycja na pestycydy stanowi potencjalne ryzyko zdrowotne dla ogółu populacji, a w szczególności dla pracowników rolnictwa(7-12).

Wiele badań koncentrowało się na związku pomiędzy ekspozycją na pestycydy a występowaniem nowotworów, takich jak mięsak, szpiczak mnogi, rak pęcherza moczowego, rak trzustki i białaczka(13-21). Niektórzy badacze zaobserwowali, że narażenie zawodowe na pestycydy wiąże się z ryzykiem wystąpienia chłoniaka nieziarniczego (NHL) (22-24).NHL jest heterogenną grupą nowotworów limfoproliferacyjnych, które mogą powstać z limfocytów B lub T. Wzajemne rearanżacje genów immunoglobulin komórek B lub receptorów komórek T występują zonkogenami w niedojrzałych komórkach limfoidalnych w szpiku kostnym lub w bardziej dojrzałych komórkach obwodowych narządów limfoidalnych (25,26).Te translokacje chromosomalne często prowadzą do nadekspresji onkogenów i powodują, że komórki stają się złośliwe i rozmnażają się w sposób niekontrolowany (26).

Translokacja chromosomalna t(14;18)(q32;q21) jest jedną z najczęstszych nieprawidłowości chromosomalnych w NHL, która występuje w 70-90% przypadków chłoniaka pęcherzykowego (FL), 20-30% chłoniaka rozlanego z dużych komórek B i 5-10% innych, mniej popularnych typów (27). Co więcej, zwiększona częstość występowania translokacji chromosomowej t(14;18)(q32;q21) została wykryta w limfocytach krwi obwodowej osób zawodowo narażonych na pestycydy (28,29).

Celem tego badania jest wykrycie wpływu pestycydów na translokację chromosomową t(14;18) u pracowników rolnych po krótkotrwałej ekspozycji.

Materiały i metody

Oświadczenie etyczne

Protokół badania został zatwierdzony przez Komitet Etyczny Szpitala Uniwersyteckiego w Katanii (Katania, Włochy), a pisemna świadoma zgoda wszystkich uczestników została uzyskana przed włączeniem ich do badania.

Projekt badania i narażenie na pestycydy

Badanie to było badaniem kontrolnym przeprowadzonym w prowincji Ragusa (Sycylia, Włochy), która liczy ~320,000 mieszkańców. Jest to okręg wysoce rolniczy z largeproportion of the population employed in ~25,000 farms producingfruits and vegetables in greenhouses and products derived from animal husbandry. Wszystkie te działania wiążą się ze stosowaniem dużych ilości pestycydów. Główne uprawy to marchew, ziemniaki i cukinia na otwartym polu oraz pomidory, bakłażany, papryka i cukinia w szklarniach (30).

Zrekrutowano 52 pracowników zawodowo narażonych na działanie pestycydów i 52 nienarażonych. Pracownicy narażeni na działanie pestycydów biorący udział w badaniu wykonywali swoją pracę w środkach ochrony indywidualnej (SPD): rękawicach, maskach, kombinezonach i okularach ochronnych. Aplikacja pestycydów odbywała się 5-6 razy w tygodniu i trwała 6-7 godzin roboczych. Pracownicy nieeksponowani (kontrola) nie mieli kontaktu z pestycydami. Pracownicy narażeni byli zatrudniani sezonowo (od kwietnia do sierpnia), przy uprawie pomidorów szklarniowych. Nie było możliwe wykrycie markerów biologicznych ekspozycji w odniesieniu do stosowanych pestycydów.

Tabela I.

Pestycydy stosowane w szklarni w uprawie pomidorów.

W celu zebrania dokładnych danych demograficznych, historii medycznej, zwyczajów związanych z opieką zdrowotną oraz narażenia na pestycydy i/lub inne substancje chemiczne, przeszkoleni ankieterzy przeprowadzili ustrukturyzowany kwestionariusz badający ryzyko środowiskowe i zawodowe. Kryteriami wyłączenia były: cukrzyca, nadciśnienie, choroby tarczycy, wątroby, nerek, płuc i choroby hematologiczne.

t(14;18)-(IgH;Bcl-2)translokacja

Próbki krwi obwodowej (10 ml/przedmiot) pobrano w probówkach vacutainer EDTA (K2) (BD Biosciences, FranklinLakes, NJ, USA). DNA ekstrahowano z PBMCs zawartych w płaszczu buforowym zgodnie z instrukcjami producenta.

t(14;18)-(IgH;Bcl-2) translokacja, w regionie głównego punktu zwrotnego (MBR) i regionie mniejszego klastra (mcr), została oceniona za pomocą łańcuchowej reakcji polimerazy (PCR), jak wcześniej opisano (31). AccuPrime™SuperMix (Invitrogen Life Technologies, Carlsbad, CA, USA) został użyty w celu zwiększenia specyficzności i czułości analizy PCR. Czułość naszego testu wynosiła 10-5.

Integralność DNA każdej próbki została zweryfikowana przez amplifikację 430 bp fragmentu genu hormonu wzrostu(GH) metodą PCR. Sekwencje primera forward i reverse użyte do amplifikacji GH były następujące: 5-CACCATTACATCCCACCT-3 i5-GCTTCTTGCTTGAGTGA-3, odpowiednio. Warunki PCR użyte do amplifikacji GH były identyczne z tymi, które podano dla MBR(31).

Produkty PCR zostały rozdzielone przez elektroforezę na 2,5% żelu agarozowym. Pojedyncze pasma uzyskane przez amplifikację MBR i MCR z próbek krwi były oczyszczane z żelu, a następnie sekwencjonowane na analizatorze genetycznymABI 310 (Perkin-Elmer, Foster City, CA, USA) zgodnie z wcześniejszymi doniesieniami (31).

Analiza statystyczna

Dane zostały podsumowane jako średnie ± SD dla zmiennych ciągłych i częstotliwości dla zmiennych kategorycznych. Normalność sprawdzono testem Kołmogrowa-Smirnowa, a jednorodność wariancji testem Levenesa. Regresję logistyczną zastosowano do oceny występowania translokacji t(14;18) u pracowników narażonych na działanie pestycydów, palaczy i konsumentów alkoholu. Analizę danych przeprowadzono przy użyciu programu GraphPad Prism w wersji 7.0 (GraphPad Software,Inc., La Jolla, CA, USA).

Wyniki

Grupa eksponowana prezentowała charakterystykę podobną do grupy nieeksponowanej. W szczególności, wszyscy badani byli mężczyznami i nie było statystycznie istotnych różnic co do wieku, BMI, nawyków palenia, spożycia alkoholu, wieku produkcyjnego i ekspozycji na światło słoneczne.

Pracownicy rolni byli średnio narażeni na działanie pestycydów przez ~3,7 h dziennie przez 5 lat. Tabela II przedstawia główną charakterystykę próby; Ryc. 1.

Tabela II.

Charakterystyka badanej populacji wyrażona jako częstość lub średnia ± SD.

Częstość występowania translokacji BCL2-IGH t(14;18) u pracowników zawodowo narażonych na pestycydy wynosiła 10% (5 z 52) vs.8% (4 z 52) u pracowników zawodowo narażonych na pestycydy.% (4 z 52) w grupie kontrolnej. Wyniki te wskazują na brak istotnego związku pomiędzy zawodowym narażeniem na pestycydy a zwiększoną częstością występowania translokacji chromosomowejBCL2-IGH t(14;18) u rolników (Tabela III).

Tabela III.

Regresja logistyczna t(14;18)translokacja chromosomowa.

Nadto nie można było ocenić częstości występowania t(14;18) w zależności od rodzaju stosowanych pestycydów, ponieważ wszyscy badani byli narażeni na działanie insektycydów i fungicydów.

Dyskusja

Translokacja chromosomowa t(14;18)(q32;q21) jest jedną z najczęstszych nieprawidłowości chromosomalnych w NHL. Translokacja ta obejmuje 2 specyficzne loci, locus łańcucha ciężkiego immunoglobuliny (IgH) na chromosomie 14q32 oraz locus B-cellleukemia/lymphoma 2 (BCL2) na chromosomie 18q2l (32).

Podczas typowego procesu translokacji gen BCL2 znajdujący się na chromosomie 18 jest zestawiany z aktywnym transkrypcyjnie genem IgH na chromosomie 14, co powoduje nadekspresję tego pierwszego. W konsekwencji, zwiększona anty-apoptotyczna funkcja BCL2 zwiększa przeżywalność komórek, co stanowi wczesny etap w procesie złośliwym NHL (32-34).

Zwiększona częstość występowania NHL została odnotowana wśród rolników i innych grup zawodowych pracujących z pestycydami(35). Ponadto, zwiększoną częstość występowania translokacji chromosomalnej t(14;18)(q32;q21) wykryto w limfocytach krwi obwodowej osób zawodowo narażonych na pestycydy (29,36,37).

W ostatnim badaniu przeprowadzonym na 96 pracownikach rolnych, Qaqish i wsp. (1) stwierdzili, że narażenie zawodowe na pestycydy w rolnictwie na otwartej przestrzeni oraz insektycydy stosowane na zwierzętach, zwiększyło częstość występowania translokacji chromosomalnej t(14;18). Rolnicy zawodowo narażeni na pestycydy i insektycydy byli 13,5 razy bardziej narażeni na nosicielstwo t(14;18). Z kolei 63,5% (61 z 96) rolników w porównaniu z 11,5% (11 z 96) osób z grupy kontrolnej było nosicielami translokacji.

W naszym badaniu częstość występowania translokacji BCL2-IGH t(14;18) u pracowników zawodowo narażonych na pestycydy wynosiła 10% (5 z 52) vs. 8% (4 z 52) u pracowników zawodowo narażonych na pestycydy. 8% (4 z 52) w grupie kontrolnej, bez istotnie statystycznej różnicy.

Różnica wyników pomiędzy naszymi badaniami a badaniami Qaqishet al (1) może być przypisana mniejszemu czasowi ekspozycji (50%) w porównaniu z tymi ostatnimi (10.9±7.9 vs. 5.1±0.8 lat).

Poza tym, w naszej próbie wszyscy pracownicy korzystali ze standardowych SPD, podczas gdy w badaniu Qaqish i wsp. (1) tylko 2,1% rolników używało masek, a 27,1% masek i rękawic.

Jak wykazali Qaqish i wsp. (1), używanie SPD może pomóc w zapobieganiu t(14;18).Ryzyko wystąpienia t(14;18) było istotnie związane z ekspozycją na różne rodzaje pestycydów: insektycydy, herbicydy i środki zapachowe (28).

Chiu i wsp. (28) zaobserwowali, że stosowanie insektycydów i herbicydów było związane z 2,6- do 3-krotnie wyższym ryzykiem t(14;18)-pozytywnego NHL. Wyniki te są zgodne z wynikami wcześniejszych badań, w których pestycydy były szczególnie związane z pęcherzykowym NHL (23,38-40), który jest zwykle pozytywny dla t(14;18).

Chiu et al (28) i Schroeder et al (41) stwierdzili, że ryzyko NHL związane z rolnictwem i narażeniem na dieldrynę, lindan, atrazynę lub fungicydy było związane z t(14;18).

We Włoszech stosowanie pestycydów takich jak dieldryna, lindan i atrazyna zostało zakazane dawno temu. Ponadto, narażone obiekty w naszym badaniu były narażone zarówno na fungicydy (propamocarbhydrochloride, metalaxyl-M, cyproconazole) jak i na insektycydy (thiamethoxam, deltamathrin, acrinathrin i abamectin) i tak działanie każdego z nich nie mogło być zróżnicowane.

Wyniki naszego badania są zgodne z wynikami zaobserwowanymi przez innych (1,28), którzy wykryli zwiększone ryzyko, gdy środki owadobójcze i chwastobójcze są stosowane przez dłuższy czas i w powiązaniu z użyciem SPD.

Oszacowaliśmy wpływ potencjalnych czynników zakłócających na częstość wykrywania translokacji BCL2-IGH t(14;18). Po pierwsze, spożycie alkoholu nie wpłynęło na częstość wykrywania, co może być związane z niską częstością spożycia alkoholu w badanej grupie (17,6±8,5 vs. 18,7±7,7 g/dzień odpowiednio u osób narażonych i nie narażonych). Dodatkowo nie stwierdzono związku pomiędzy wiekiem badanych a częstością wykrywania translokacji BCL2-IGH t(14;18) (1,29).

Nasze badania, jak również Roulland i wsp. (29) oraz Qaqish i wsp. (1) obejmowały osoby z medianą wieku<50 lat, przy czym związek z wiekiem wykryto jedynie w próbkach starszych niż 60 (42) i 70 lat (43). Ponadto, palenie papierosów nie zwiększyło częstości występowania translokacji BCL2-IGHt(14;18) w naszej próbie, co jest zgodne z wynikami wcześniejszych badań (28). Co więcej, ekspozycja na światło słoneczne nie miała wpływu na częstość wykrywania t(14:18), co jest zgodne z wynikami innych badań (29).

W związku z powyższym, na podstawie wyników naszego badania można wnioskować, że stałe stosowanie zalecanych przez prawo SPD oraz czas ekspozycji mogą mieć wpływ na częstość translokacji u pracowników narażonych na pestycydy.

Nasze badania powinny być kontynuowane z uwzględnieniem obserwacji tych pracowników, w celu lepszego określenia roli czynnika „czas ekspozycji” na translokację genów.

Qaqish BM, Al-Dalahmah O, Al-Motassem Y,Battah A and Ismail SS: Occupational exposure to pesticides andoccurrence of the chromosomal translocation t(14;18) among farmersin Jordan. Toxicol Rep. 3:225-229. 2016. Zobacz artykuł : Google Scholar

Bolognesi C: Genotoxicity of pesticides: areview of human biomonitoring studies. Mutat Res. 543:251-272.2003. Wyświetl artykuł : Google Scholar : PubMed/NCBI

Martínez-Valenzuela C, Waliszewski SM,Amador-Muñoz O, Meza E, Calderón-Segura ME, Zenteno E,Huichapan-Martínez J, Caba M, Félix-Gastélum R andLongoria-Espinoza R: Aerial pesticide application causes DNA damagein pilots from Sinaloa, Mexico. Environ Sci Pollut Res Int. Nov5-2016.(Epub ahead of print).

Gaikwad AS, Karunamoorthy P, KondhalkarSJ, Ambikapathy M and Beerappa R: Assessment of hematological,biochemical effects and genotoxicity among pesticide sprayers ingrape garden. J Occup Med Toxicol. 10:112015. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Ismail AA, Rohlman DS, Rasoul Abdel GM,Salem Abou ME and Hendy OM: Clinical and biochemical parameters ofchildren and adolescents applying pesticides. Int J Occup EnvironMed. 1:132-143. 2010.PubMed/NCBI

Patil JA, Patil AJ and Govindwar SP:Biochemical effects of various pesticides on sprayers of grapegardens. Indian J Clin Biochem. 18:16-22. 2003. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Saldana TM, Basso O, Hoppin JA, Baird DD,Knott C, Blair A, Alavanja MCR and Sandler DP: Pesticide exposureand self-reported gestational diabetes mellitus in the AgriculturalHealth Study. Diabetes Care. 30:529-534. 2007. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Ledda C, Fiore M, Santarelli L, Bracci M,Mascali G, DAgati MG, Busà A, Ferrante M and Rapisarda V:Gestational hypertension and organophosphorus pesticide exposure: across-sectional study. Biomed Res Int. 2015:2808912015. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Malekirad AA, Faghih M, Mirabdollahi M,Kiani M, Fathi A and Abdollahi M: Neurocognitive, mental health,and glucose disorders in farmers exposed to organophosphoruspesticides. Arh Hig Rada Toksikol. 64:1-8. 2013. Zobacz artykuł : Google Scholar : PubMed/NCBI

Costa C, Rapisarda V, Catania S, Di NolaC, Ledda C and Fenga C: Cytokine patterns in greenhouse workersoccupationally exposed to α-cypermethrin: an observational study.Environ Toxicol Pharmacol. 36:796-800. 2013. Wyświetl artykuł : Google Scholar : PubMed/NCBI

Bolognesi C, Creus A, Ostrosky-Wegman Pand Marcos R: Micronuclei and pesticide exposure. Mutagenesis.26:19-26. 2011. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Sailaja N, Chandrasekhar M, Rekhadevi PV,Mahboob M, Rahman MF, Vuyyuri SB, Danadevi K, Hussain SA and GroverP: Genotoxic evaluation of workers employed in pesticideproduction. Mutat Res. 609:74-80. 2006. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

La Vecchia C, Negri E, DAvanzo B andFranceschi S: Occupation and lymphoid neoplasms. Br J Cancer.60:385-388. 1989. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Brown LM, Blair A, Gibson R, Everett GD,Cantor KP, Schuman LM, Burmeister LF, Van Lier SF and Dick F:Pesticide exposures and other agricultural risk factors forleukemia among men in Iowa and Minnesota. Cancer Res. 50:6585-6591.1990.PubMed/NCBI

Hardell L and Eriksson M: A case-controlstudy of non-Hodgkin lymphoma and exposure to pesticides. Cancer.85:1353-1360. 1999. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Meinert R, Schüz J, Kaletsch U, Kaatsch Pand Michaelis J: Leukemia and non-Hodgkin’s lymphoma in childhoodand exposure to pesticides: results of a register-basedcase-control study in Germany. Am J Epidemiol. 151:639-646. 2000.View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Petrelli G, Figà-Talamanca I, Tropeano R,Tangucci M, Cini C, Aquilani S, Gasperini L and Meli P:Reproductive male-mediated risk: spontaneous abortion among wivesof pesticide applicators. Eur J Epidemiol. 16:391-393. 2000.View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Lockwood AH: Pesticides and parkinsonism:is there an etiological link? Curr Opin Neurol. 13:687-690. 2000.View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Ji BT, Silverman DT, Stewart PA, Blair A,Swanson GM, Baris D, Greenberg RS, Hayes RB, Brown LM, Lillemoe KD,et al: Occupational exposure to pesticides and pancreatic cancer.Am J Ind Med. 39:92-99. 2001. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Brody JG, Aschengrau A, McKelvey W, RudelRA, Swartz CH and Kennedy T: Breast cancer risk and historicalexposure to pesticides from wide-area applications assessed withGIS. Environ Health Perspect. 112:889-897. 2004. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Calvert GM, Plate DK, Das R, Rosales R,Shafey O, Thomsen C, Male D, Beckman J, Arvizu E and Lackovic M:Acute occupational pesticide-related illness in the US, 1998-1999:surveillance findings from the SENSOR-pesticides program. Am J IndMed. 45:14-23. 2004. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Blair A and Zahm SH: Agriculturalexposures and cancer. Environ Health Perspect. 103:(Suppl 8).205-208. 1995. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Chiu BC and Weisenburger DD: An update ofthe epidemiology of non-Hodgkin’s lymphoma. Clin Lymphoma.4:161-168. 2003. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Dich J, Zahm SH, Hanberg A and Adami HO:Pesticides and cancer. Cancer Causes Control. 8:420-443. 1997.View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Schwaenen C, Wessendorf S, Kestler HA,Döhner H, Lichter P and Bentz M: DNA microarray analysis inmalignant lymphomas. Ann Hematol. 82:323-332. 2003. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Potter JD: W kierunku ostatniej kohorty. CancerEpidemiol Biomarkers Prev. 13:895-897. 2004.PubMed/NCBI

Janz S, Potter M and Rabkin CS: Lymphoma-and leukemia-associated chromosomal translocations in healthyindividuals. Genes Chromosomes Cancer. 36:211-223. 2003. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Chiu BC, Dave BJ, Blair A, Gapstur SM,Zahm SH and Weisenburger DD: Agricultural pesticide use and risk oft(14;18)-defined subtypes of non-Hodgkin lymphoma. Blood.108:1363-1369. 2006. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Roulland S, Lebailly P, Lecluse Y, BriandM, Pottier D and Gauduchon P: Characterization of the t(14;18)BCL2-IGH translocation in farmers occupationally exposed topesticides. Cancer Res. 64:2264-2269. 2004. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Licciardello F, Antoci ML, Brugaletta Land Cirelli GL: Evaluation of groundwater contamination in acoastal area of south-eastern Sicily. J Environ Sci Health B.46:498-508. 2011.PubMed/NCBI

Libra M, Gloghini A, Malaponte G, GangemiP, De Re V, Cacopardo B, Spandidos DA, Nicoletti F, Stivala F,Zignego AL, et al: Association of t(14;18) translocation with HCVinfection in gastrointestinal MALT lymphomas. J Hepatol.49:170-174. 2008. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Nadel B, Marculescu R, Le T, Rudnicki M,Böcskör S and Jäger U: Novel insights into the mechanism oft(14;18)(q32;q21) translocation in follicular lymphoma. LeukLymphoma. 42:1181-1194. 2001. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Hockenbery D, Nuñez G, Milliman C,Schreiber RD and Korsmeyer SJ: Bcl-2 is an inner mitochondrialmembrane protein that blocks programmed cell death. Nature.348:334-336. 1990. ViewArticle : Google Scholar : PubMed/NCBI

Ismail SI, Sughayer MA, Al-Quadan TF,Qaqish BM and Tarawneh MS: Frequency of t(14;18) in follicularlymphoma patients: geographical or technical variation. Int J LabHematol. 31:535-543. 2009. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Chiu BC and Blair A: Pesticides,chromosomal aberrations, and non-Hodgkins lymphoma. J Agromed.14:250-255. 2009. View Article : Google Scholar

Garry VF, Tarone RE, Long L, Griffith J,Kelly JT i Burroughs B: Pesticide appliers with mixed pesticideexposure: G-banded analysis and possible relationship tonon-Hodgkins lymphoma. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 5:11-16.1996.PubMed/NCBI

Agopian J, Navarro JM, Gac AC, Lecluse Y,Briand M, Grenot P, Gauduchon P, Ruminy P, Lebailly P, Nadel B, etal: Agricultural pesticide exposure and the molecular connection tolymphomagenesis. J Exp Med. 206:1473-1483. 2009. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Zahm SH, Weisenburger DD, Babbitt PA, SaalRC, Vaught JB, Cantor KP and Blair A: A case-control study ofnon-Hodgkins lymphoma and the herbicide 2,4-dichlorophenoxyaceticacid (2,4-D) in eastern Nebraska. Epidemiology. 1:349-356. 1990.View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Cantor KP, Blair A, Everett G, Gibson R,Burmeister LF, Brown LM, Schuman L and Dick FR: Pesticides andother agricultural risk factors for non-Hodgkins lymphoma among menin Iowa and Minnesota. Cancer Res. 52:2447-2455. 1992.PubMed/NCBI

Zahm SH and Blair A: Pesticides andnon-Hodgkins lymphoma. Cancer Res. 52:(Suppl 19). 5485s-5488s.1992.PubMed/NCBI

Schroeder JC, Olshan AF, Baric R, Dent GA,Weinberg CR, Yount B, Cerhan JR, Lynch CF, Schuman LM, Tolbert PE,et al: Agricultural risk factors for t(14;18) subtypes ofnon-Hodgkins lymphoma. Epidemiology. 12:701-709. 2001. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Liu Y, Hernandez AM, Shibata D andCortopassi GA: BCL2 translocation frequency rises with age inhumans. Proc Natl Acad Sci USA. 91:8910-8914. 1994. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

Hirt C, Weitmann K, Schüler F, Kiefer T,Rabkin CS, Hoffmann W and Dölken G: Circulating t(14;18)-positive cells in healthy individuals: association with age and sex but notwith smoking. Leuk Lymphoma. 54:2678-2684. 2013. View Article : Google Scholar : PubMed/NCBI

.

Dodaj komentarz

Twój adres e-mail nie zostanie opublikowany.